Нажмите на эту строку чтобы перейти к Новостям сайта "Русский врач"

Перейти
на сайт
журнала
"Врач"
Перейти на сайт журнала "Медицинская сестра"
Перейти на сайт журнала "Фармация"
Перейти на сайт журнала "Молекулярная медицина"
Перейти на сайт журнала "Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии"
Журнал включен в российские и международные библиотечные и реферативные базы данных

ВАК (Россия)
РИНЦ (Россия)
Эко-Вектор (Россия)

КОНЦЕНТРАЦИЯ ЭССЕНЦИАЛЬНЫХ МИКРОЭЛЕМЕНТОВ В СЫВОРОТКЕ КРОВИ И МОЧЕ ЖЕНЩИН С ОСТЕОПОРОЗОМ

DOI: https://doi.org/10.29296/25877313-2023-12-08
Номер журнала: 
12
Год издания: 
2023

Т.В. Коробейникова
к.т.н., зав. лабораторией молекулярной диетологии, Центр биэлементологии и экологии человека,
Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский университет) (Москва, Россия);
доцент кафедры медицинской элементологии,
Российский университет дружбы народов (Москва, Россия)
E-mail: tatcvetk@yandex.ru
Е.В. Рылина
к.фарм.н., вед. науч. сотрудник, лаборатория молекулярной диетологии, Центр биэлементологии и экологии человека,
Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский университет) (Москва, Россия);
доцент кафедры медицинской элементологии,
Российский университет дружбы народов (Москва, Россия)
E-mail: edirector@drskalny.ru
А.Л. Мазалецкая
к.псих.н., вед. науч. сотрудник, лаборатория молекулярной диетологии, Центр биэлементологии и экологии человека,
Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский университет) (Москва, Россия);
науч. сотрудник, лаборатория экобиомониторинга и контроля качества,
Ярославский государственный университет им. П.Г. Демидова (г. Ярославль, Россия)
E-mail: almaz_305@mail.ru
А.А. Тиньков
д.м.н., зав. лабораторией экобиомониторинга и контроля качества,
Ярославский государственный университет им. П.Г. Демидова (г. Ярославль, Россия);
вед. науч. сотрудник, лаборатория молекулярной диетологии,
Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский университет) (Москва, Россия); доцент ка-федры медицинской элементологии,
Российский университет дружбы народов (Москва, Россия)
E-mail: tinkov.a.a@gmail.com
А.В. Скальный
д.м.н., профессор, вед. науч. сотрудник, лаборатория экобиомониторинга и контроля качества,
Ярославский государственный университет им. П.Г. Демидова (г. Ярославль, Россия);
директор Центра биэлементологии и экологии человека,
Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский университет) (Москва, Россия); зав. кафед-рой медицинской элементологии,
Российский университет дружбы народов (Москва, Россия)
E-mail: skalny3@microelements.ru

Цель исследования – изучение концентрации эссенциальных микроэлементов в сыворотке крови и моче женщин с остеопорозом. Материал и методы. Обследовано 100 взрослых женщин в возрасте от 30 до 70 лет, среди которых 50 обследуемых имели диагноз остеопо-роз без патологического перелома (М81); контрольную группу составили 50 здоровых женщин. Определение концентрации эссенциальных мик-роэлементов в моче и сыворотке крови проводили методом масс-спектрометрии с индуктивно-связанной плазмой. Результаты. Результаты проведенного исследования продемонстрировали, что концентрация кобальта и цинка в моче пациентов с остеопоро-зом была достоверно ниже соответствующих контрольных значений на 42 и 44%. Ковариационный анализ показал достоверное влияние нали-чия остеопороза и величины индекса массы тела (ИМТ) на концентрацию цинка в моче. Значимость влияния остеопороза на концентрацию ко-бальта в моче приближалась к статистически значимой. В то же время сывороточная концентрация кобальта у пациентов была ниже таковой у здоровых обследуемых на 21%, тогда как значимых различий в сывороточном уровне цинка выявлено не было. Наличие остеопороза у обсле-дуемых женщин также являлось ведущим фактором, оказывающим статистически значимое влияние на концентрацию кобальта в сыворотке крови независимо от возраста и величины ИМТ. Выводы. Результаты проведенного исследования указывают на взаимосвязь дефицита цинка и кобальта в организме женщин и развитием остеопороза. Предполагается, что персонализированная коррекция обеспеченности организма данными металлами может способствовать сни-жению риска прогрессирования остеопороза за счет реализации их остеогенного эффекта. Вместе с тем непосредственные механизмы взаимо-связи между уровнем цинка и кобальта и развитием остеопороза, равно как и эффективность коррекции обмена данных элементов в профилак-тике остеопороза, требуют дальнейшего изучения.
Ключевые слова: 
остеопороз
цинк
кобальт
дефицит
микронутриенты.
Для цитирования: 
Коробейникова Т.В., Рылина Е.В., Мазалецкая А.Л., Тиньков А.А., Скальный А.В. КОНЦЕНТРАЦИЯ ЭССЕНЦИАЛЬНЫХ МИКРОЭЛЕМЕНТОВ В СЫВОРОТКЕ КРОВИ И МОЧЕ ЖЕНЩИН С ОСТЕОПОРОЗОМ . Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии, 2023; (12): 64-https://doi.org/10.29296/25877313-2023-12-08
Список литературы: 
  1. Akkawi I., Zmerly H. Osteoporosis: current concepts. Joints. 2018; 6(02):122–127. DOI: 10.1055/s-0038-1660790.
  2. Salari N., Ghasemi H., Mohammadi L., Behzadi M. H., Rabieenia E., Shohaimi S., Mohammadi M. The global prevalence of osteopo-rosis in the world: a comprehensive systematic review and meta-analysis. J. Orthop. Surg. Res. 2021; 16(1): 609. DOI: 10.1186/s13018-021-02772-0.
  3. Noh J. W., Park H., Kim M., Kwon Y. D. Gender Differences and Socioeconomic Factors Related to Osteoporosis: A Cross-Sectional Analysis of Nationally Representative Data. J. Womens Health (Larchmt). 2018; 27(2): 196–202. DOI: 10.1089/jwh.2016.6244.
  4. Ilesanmi-Oyelere B. L., Kruger M. C. Nutrient and Dietary Patterns in Relation to the Pathogenesis of Postmenopausal Osteoporosis-A Literature Review. Life (Basel). 2020; 10(10): 220. DOI: 10.3390/life10100220.
  5. Skalny A. V., Aschner M., Silina E. V., Stupin V. A., Zaitsev O. N., Sotnikova T. I., Tazina S. I., Zhang F., Guo X., Tinkov A. A. The Role of Trace Elements and Minerals in Osteoporosis: A Review of Epidemiological and Laboratory Findings. Biomolecules. 2023; 13(6): 1006. DOI: 10.3390/biom13061006.
  6. Zheng J., Mao X., Ling J., He Q., Quan J. Low serum levels of zinc, copper, and iron as risk factors for osteoporosis: a meta-analysis. Biol. Trace Elem. Res. 2014; 160(1): 15–23. DOI: 10.1007/s12011-014-0031-7.
  7. Zheng J., Mao X., Ling J., He Q., Quan J., Jiang H. Association between serum level of magnesium and postmenopausal osteoporo-sis: a meta-analysis. Biol. Trace Elem. Res. 2014; 159(1-3): 8–14. DOI: 10.1007/s12011-014-9961-3.
  8. Hreha J., Wey A., Cunningham C., Krell E.S., Brietbart E.A., Paglia D.N., Montemurro N. J, Nguyen D.A., Lee Y.J., Komlos D., Lim E., Benevenia J., O’Connor J. P., Lin S.S. Local manganese chloride treatment accelerates fracture healing in a rat model. J Or-thop Res. 2015; 33(1): 122–30. DOI: 10.1002/jor.22733.
  9. Patntirapong S., Habibovic P., Hauschka P.V. Effects of soluble cobalt and cobalt incorporated into calcium phosphate layers on os-teoclast differentiation and activation. Biomaterials. 2009; 30(4): 548–55. DOI: 10.1016/j.biomaterials.2008.09.062.
  10. Pu Y., Sun H., Liu J., Amantai D., Yao W., Han X., He H. Cobalt Chloride Promotes Osteogenesis of Rat Bone Marrow Mesenchy-mal Stem Cells in vitro and in vivo. Indian J. Pharm. Sci. 2023; 85: 1–10.
  11. Hussain S. I. B., AlKhenizan A., Mahmoud A., Qashlaq H. The correlation between vitamin B12 and folate levels and bone mineral density among the Saudi population in a primary care setting. Jour-nal of Family Medicine and Primary Care, 2023; 12(6): 1063–1068.
  12. Yadav V. K. Vitamin B 12 as a regulator of bone health. Curr. Sci. 2018 Apr 25:1632-8.
  13. Kim G.S., Kim C.H., Park J.Y., Lee K.U., Park C.S. Effects of vit-amin B12 on cell proliferation and cellular alkaline phosphatase ac-tivity in human bone marrow stromal osteoprogenitor cells and UMR106 osteoblastic cells. Metabolism. 1996; 45(12): 1443–1446. DOI: 10.1016/s0026-0495(96)90171-7.
  14. Vaes B.L., Lute C., Blom H.J., Bravenboer N., de Vries T.J., Everts V., Dhonukshe-Rutten R.A., Müller M., de Groot L.C., Steegenga W.T. Vitamin B(12) deficiency stimulates osteoclastogenesis via in-creased homocysteine and methylmalonic acid. Calcif. Tissue Int. 2009; 84(5): 413–22. DOI: 10.1007/s00223-009-9244-8.
  15. Ceylan M. N., Akdas S., Yazihan N. Is Zinc an Important Trace El-ement on Bone-Related Diseases and Complications? A Meta-analysis and Systematic Review from Serum Level, Dietary Intake, and Supplementation Aspects. Biol. Trace Elem. Res. 2021; 199(2): 535–549. DOI: 10.1007/s12011-020-02193-w.
  16. Wang W.J., Huang M.N., Wang C.K., Yang A.M., Lin, C.Y. Zinc status is independently related to the bone mineral density, fracture risk assessment tool result, and bone fracture history: Results from a U.S. nationally representative survey. J. Trace Elem. Med. Biol. 2021; 67: 126765. DOI: 10.1016/j.jtemb.2021.126765.
  17. Kwun I.S., Cho Y.E., Lomeda R.A.R., Shin H.I., Choi J.Y., Kang Y.H., Beattie, J.H. Zinc deficiency suppresses matrix mineralization and retards osteogenesis transiently with catch-up possibly through Runx 2 modulation. Bone. 2010; 46(3): 732–741. DOI: 10.1016/j.bone.2009.11.003.
  18. Park J.H., Park S.A., Kang Y.H., Hwa S.M., Koh E.B., Hwang S.C., Oh S.H., Byun J.H. Zinc Sulfate Stimulates Osteogenic Phe-notypes in Periosteum-Derived Cells and Co-Cultures of Perioste-um-Derived Cells and THP-1 Cells. Life (Basel). 2021; 11(5): 410. DOI: 10.3390/life11050410.
  19. Seo H. J., Cho Y. E., Kim T., Shin H. I., Kwun I. S. Zinc may in-crease bone formation through stimulating cell proliferation, alkaline phosphatase activity and collagen synthesis in osteoblastic MC3T3-E1 cells. Nutr. Res. Pract. 2010; 4(5): 356–361. DOI: 10.4162/nrp.2010.4.5.356. E
  20. Yusa K., Yamamoto O., Iino M., Takano H., Fukuda M., Qiao Z., Sugiyama T. Eluted zinc ions stimulate osteoblast differentiation and mineralization in human dental pulp stem cells for bone tissue engineering. Arch. Oral Biol. 2016; 71: 162–169. DOI: 10.1016/j.archoralbio.2016.07.010.
  21. Raisz L. G. Pathogenesis of osteoporosis: concepts, conflicts, and prospects. J. Clin. Invest. 2005; 115(12): 3318–25. DOI: 10.1172/JCI27071.
  22. Cousins R. J., Liuzzi J. P., Lichten L. A. Mammalian zinc transport, trafficking, and signals. J Biol Chem. 2006; 281(34): 24085–9. DOI: 10.1074/jbc.R600011200.
  23. Vázquez-Lorente H., Molina-López J., Herrera-Quintana L., Gamarra-Morales Y., Quintero-Osso B., López-González B., Planells E. Erythrocyte Zn concentration and antioxidant response after supplementation with Zn in a postmenopausal population. A double-blind randomized trial. Exp Gerontol. 2022; 162: 111766. DOI: 10.1016/j.exger.2022.111766.
  24. Manafa P. O., Nna C. D., Chukwuma G. O., Onyenekwe C. C., Ihim A. C., Iloghalu E. U., Okor L. O., Akulue J. C. Cobalt, copper, selenium and zinc levels in pre-menopausal and post-menopausal women in Nnewi, South-East Nigeria. Orient J. Med. 2015; 27(3-4): 93–8.
  25. Olechnowicz J., Tinkov A., Skalny A., Suliburska J. Zinc status is associated with inflammation, oxidative stress, lipid, and glucose metabolism. J. Physiol. Sci. 2018; 68(1): 19–31. DOI: 10.1007/s12576-017-0571-7.
  26. Tinkov A.A., Skalnaya M.G., Ajsuvakova O.P., Serebryansky E.P., Chao J.C., Aschner M., Skalny A.V. Selenium, zinc, chromium, and vanadium levels in serum, hair, and urine samples of obese adults assessed by inductively coupled plasma mass spectrometry. Biol. Trace Elem. Res. 2021; 199: 490–499. DOI: 10.1007/s12011-020-02177-w.