Нажмите на эту строку чтобы перейти к Новостям сайта "Русский врач"

Перейти
на сайт
журнала
"Врач"
Перейти на сайт журнала "Медицинская сестра"
Перейти на сайт журнала "Фармация"
Перейти на сайт журнала "Молекулярная медицина"
Перейти на сайт журнала "Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии"
Журнал включен в российские и международные библиотечные и реферативные базы данных

ВАК (Россия)
РИНЦ (Россия)
Эко-Вектор (Россия)

ИССЛЕДОВАНИЕ ПРЕОБРАЗОВАНИЯ ЖЕЛТОЙ СОЛИ ТЕТРАЗОЛИЯ В ФОРМАЗАН В КЛЕТКАХ HeLa

DOI: https://doi.org/10.29296/25877313-2023-11-08
Номер журнала: 
11
Год издания: 
2023

А.Ю. Сёмушкина
аспирант, науч. сотрудник, лаборатория атомарно-молекулярной биорегуляции и селекции,
ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт лекарственных и ароматических растений» (Москва, Россия)
E-mail: syomushkina@vilarnii.ru
Д.С. Кабанов
к.б.н., вед. науч. сотрудник, отдел медико-биологических проблем,
ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт лекарственных и ароматических растений» (Москва, Россия)

Актуальность. МТТ-тест является одним из наиболее распространённых методов определения цитотоксического действия экстрактов растений и их индивидуальных соединений. Несмотря на обширное применение этого метода, остаётся неясным, разрушают ли кристаллы МТТ-формазана плазматическую мембрану клеток при восстановлении МТТ в МТТ-формазан; происходит ли потеря формазанового продукта в случае разруше-ния клеток в процессе проведения исследования цитотоксического действия методом МТТ. Цель исследования – изучение преобразования МТТ в МТТ-формазан в клетках HeLa методами микроскопии и спектрофотометрии, а также определение возможности потери формазанового продукта при исследовании цитотоксического действия природных и синтетических соедине-ний методом МТТ. Материал и методы. Клетки HeLa высевали на покровные стекла в бюксах, инкубировали с раствором МТТ (в конечных концентрациях 0,1 и 0,5 мг/мл), изучали при помощи световой микроскопии через 30, 60, 120 и 240 мин после добавления МТТ. При исследовании методом спектрофо-тометрии, в 96-луночный планшет вносили клетки (5×104 к/лунку), добавляли раствор МТТ и инкубировали в течение 30, 60, 120 и 240 мин, ре-гистрировали спектры поглощения МТТ и МТТ-формазана при помощи планшетного спектрофотометра. Результаты. Исследование методом микроскопии показало две фазы в преобразовании МТТ клетками в МТТ-формазан – образование гранул и образование кристаллов МТТ-формазана. Максимальное соотношение кристаллов к гранулам МТТ-формазана, а также практически полное раз-рушение клеток наблюдали на 240-й мин инкубации методом световой микроскопии. Однако при исследовании методом спектрофотометрии, по-сле разрушения клеток диметилсульфоксидом, значения оптической плотности раствора МТТ-формазана через 120 мин инкубации и через 240 мин инкубации были практически одинаковыми. Следовательно, преобразование МТТ-формазана из гранул в кристаллы не влияет на результаты определения оптической плотности, несмотря на разрушение клеток. Культуральная среда без клеток не восстанавливает МТТ в МТТ-формазан. В супернатанте от клеток без их разрушения также не наблюдалось значительного количества МТТ-формазана. Выводы. Кристаллы МТТ-формазана не растворяются в культуральной среде и растворяются в диметилсульфоксиде. В связи с этим разруше-ние клеток не приводит к потере формазанового продукта при восстановлении МТТ в формазан и не влияет на результаты определения цитоток-сического действия.

Ключевые слова: 
HeLa
МТТ
формазан
гранулы формазана
кристаллы формазана
световая микроскопия
спектрофотометрия.
Для цитирования: 
Сёмушкина А.Ю., Кабанов Д.С. ИССЛЕДОВАНИЕ ПРЕОБРАЗОВАНИЯ ЖЕЛТОЙ СОЛИ ТЕТРАЗОЛИЯ В ФОРМАЗАН В КЛЕТКАХ HeLa . Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии, 2023; (11): 47-https://doi.org/10.29296/25877313-2023-11-08

Список литературы: 
  1. Braissant O., Astasov-Frauenhoffer M., Waltimo T., Bonkat G. A review of methods to determine viability, vitality, and meta-bolic rates in microbiology. Frontiers in Microbiology. 2020; 11: 547458.
  2. Riss T., Moravecs R., Niles A., Duellman S., Benink H., Wor-zella T., Minor L. Cell viability assays. Assay Guidance Manual [Internet]. 2016; 1–25.
  3. Ghasemi M., Turnbull T., Sebastian S., Kempson I. The MTT assay: utility, limitations, pitfalls, and interpretation in bulk and single-cell analysis. International journal of molecular sciences. 2021; 22 (23): 12827.
  4. Stockert J.C.; Horobin R.W.; Colombo L.L.; Blázquez-Castro A. Tetrazolium salts and formazan products in Cell Biology: Viability assessment, fluorescence imaging, and labeling perspectives. Acta Histochem. 2018; 120: 159–167.
  5. Bernas T., Dobrucki J. The Role of Plasma Membrane in Bioreduction of Two Tetrazolium Salts, MTT, and CTC Arch. Biochem. Biophys. 2000; 380: 108–116.
  6. Bernas T., Dobrucki J.W. Backscattered light confocal imaging of intracellular MTT‐formazan crystals. Microscopy research and technique. 2004; 64 (2): 126–134.
  7. Fisichella M., Dabboue H., Bhattacharyya S., Saboungi M. L., Salvetat J. P., Hevor T., Guerin M. Mesoporous silica nanopar-ticles enhance MTT formazan exocytosis in HeLa cells and astrocytes. Toxicology in vitro. 2009; 23 (4): 697–703.
  8. Molinari B.L., Tasat D.R., Palmieri M.A., Cabrini R.L. Kinetics of MTT-formazan exocytosis in phagocytic and non-phagocytic cells. Micron. 2005; 36 (2): 177–183.
  9. Lü L., Zhang L., Wai M. S. M., Yew D. T. W., Xu J. Exo-cytosis of MTT formazan could exacerbate cell injury. Toxicology in vitro. 2012; 26 (4): 636–644.
  10. Liu Y., Peterson D. A., Schubert D. Amyloid β peptide alters intracellular vesicle trafficking and cholesterol homeostasis. Proceedings of the National Academy of Sciences. 1998; 22: 13266–13271.