ИЗУЧЕНИЕ МОРФОЛОГИЧЕСКИХ И ФИЗИОЛОГО-БИОХИМИЧЕСКИХ ОСОБЕННОСТЕЙ ШТАММА CLAVICEPS PURPUREA (FRIES) TULASNE BKMF-2641D В САПРОФИТНОЙ КУЛЬТУРЕ

DOI: https://doi.org/10.29296/25877313-2021-12-09
Номер журнала: 
12
Год издания: 
2021

Р.И. Бобылева к.б.н. П.С. Савин к.б.н., вед. науч. сотрудник, группа биотехнологии, Всероссийский научно-исследовательский институт лекарственных и ароматических растений (ФГБНУ ВИЛАР) (Москва, Россия) E-mail: savin-pavel@list.ru

Актуальность. Штамм гриба Claviceps purpurea (Fries) Tulasne BKMF-2641D – продуцент эрготамина используют в промышленном производстве для получения лекарственного сырья (склероциев спорыньи), содержащего пептидный эргоалкалоид – эрготамин. Использование штамма гриба C. purpurea BKMF-2641D для получения эрготамина в сапрофитной культуре позволит обеспечить возрастающие с каждым годом потребности фармацевтической промышленности в стандартном лекарственном сырье независимо от времени года, снизить производственные затраты, со-здать экологически чистое производство. Материал и методы. Отправной и обязательной работой при решении как научных, так и практических задач, связанных с использованием грибов-паразитов C. purpurea (Fries) Tulasne в качестве продуцентов биологически активных соединений в сапрофитной культуре, является по-лучение мицелиальной культуры гриба спорыньи, растущей на искусственных питательных средах и разностороннее ее изучение. Представлен экспериментальный материал по получению мицелиальной культуры спорыньи из склероция штамма гриба-паразита C. purpurea BKMF-2641D и изучению ростовых и некоторых морфологических и физиолого-биохимических особенностей при культивировании ее на искусственных пита-тельных средах (Т2, Тg и Т25). Результаты. При перенесении кусочка склероция на поверхность агаризованной среды Т2 визуально наблюдали рост мицелия вокруг кусочка склероция (5-6-е сутки), который затем разрастался и занимал всю поверхность скошенной агаризованной среды Т2 в пробирке не только с по-верхности, но проникал внутрь питательного субстрата, уплотнялся. Цвет мицелия, изначально белый, с возрастом (на 20-30-е сутки) приобре-тал фиолетовую окраску, пигмент диффундировал в питательную среду. На 14-30-е сутки роста гриб начинал активно образовывать конидии. Плотность суспензии конидий в 10 мл смыва с поверхности мицелия (на 30-е сутки роста) составила 5,8±0,20·109 шт/мл. При выращивании гри-ба спорыньи в жидкой питательной среде Т25 культура гриба представляла собой суспензию мицелия и незначительного количества конидий в культуральной среде. Окраска культуральной жидкости варьировала в зависимости от возраста культуры. Изначально молочно-белый цвет культуральной жидкости к концу ферментации изменялся и становился серым или иногда бежевым, синтеза эргоалкалоидов не наблюдали. Выводы. Проведенные эксперименты показали, что при переводе штамма гриба-паразита C. purpurea BKMF-2641D в сапрофитные условия куль-тивирования (поверхностное, глубинное) гриб хорошо растет, однако в исследуемых условиях генетическая информация, ответственная за син-тез эрготамина, не реализуется. В тоже время исходная генетическая информация не исчезает, она сохраняется, но для ее реализации требу-ются специфические условия.

Ключевые слова: 
штамм BKMF-2641D
эргоалкалоиды
рост
Для цитирования: 
Бобылева Р.И., Савин П.С. ИЗУЧЕНИЕ МОРФОЛОГИЧЕСКИХ И ФИЗИОЛОГО-БИОХИМИЧЕСКИХ ОСОБЕННОСТЕЙ ШТАММА CLAVICEPS PURPUREA (FRIES) TULASNE BKMF-2641D В САПРОФИТНОЙ КУЛЬТУРЕ . Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии, 2021; (12): -https://doi.org/10.29296/25877313-2021-12-09

Список литературы: 
  1. Барсегян А.Г., Савина Т.А., Бобылева Р.И. Селекция вариант-ных линий Claviceps purpurea эрготаминового штамма со спо-собностью к биосинтезу индольных производных в сапрофит-ной культуре. Сборник научных трудов «Нетрадиционные ре-сурсы, инновационные технологии и продукты». 2007; 16: 211–215.
  2. Комарова Е.Л., Шаин С.С. Идентификация селекционных штаммов спорыньи по алкалоидному составу индивидуальных склероциев. Химико- фармацевтический журнал. 1998; 32(8): 34–37.
  3. Савина Т.А., Савин П.С., Бобылева Р.И. Экзогенная регуляция биопродкутивности сапрофитных штаммов спорыньи. Вопро-сы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 2018; 12(21): 29–34.
  4. Трумпе Т.Е., Колхир O.K., Омельницкий П.П. и др. Труды. ВИЛАР. Химия, технология, медицина. М. 2000: 200–209.
  5. Шаин С.С. Биорегуляция продуктивности растений. Из-во «Оверлей». М. 2005. 218 с.
  6. Унифицированные методы анализа вод / Под редакцией Ю.Ю. Лурье. Из-во. «Химия». М. 1971. 375 с.
  7. Sharma Niti, Sharma Vinay K., ManikyamHemanth Kumar and Krishna Acharya Bal. Ergot Alkaloids: A Review on Therapeutic Applications. European Journal of Medicinal Plants. 2016; 14(3): 1–17.
  8. Tudzynsk P., Correia T., Keller U. Biotechnology and genetics of ergot alkaloids. Applied Microbiology and Biotechnology. 2001; 57 (5-6): 593–605.
  9. Rumpel W. Einfache serienmabige Bestimmung des Alkaloidwertes von Einzelsklerotein des Muttercorns. Farmazie. 1955; 10(3): 585–606.