ПРИМЕНЕНИЕ ВЭЖХ-МАСС-СПЕКТРОМЕТРИИ ДЛЯ КОЛИЧЕСТВЕННОГО АНАЛИЗА НЕЙРОАКТИВНЫХ АМИНОКИСЛОТ В ГОМОГЕНАТАХ ГОЛОВНОГО МОЗГА КРЫС ПОСЛЕ ДЕРИВАТИЗАЦИИ С 9-ФЛУОРЕНИЛМЕТИЛХЛОРФОРМИАТОМ

DOI: https://doi.org/10.29296/25877313-2022-05-06
Номер журнала: 
5
Год издания: 
2022

Н.С. Попов
к.фарм.н., зав. научно-исследовательской лабораторией,
ФГБОУ ВО «Тверской государственный медицинский университет Минздрава России» (г. Тверь, Россия)
В.Ю. Балабаньян
д.фарм.н., доцент, вед. науч. сотрудник, лаборатория трансляционной медицины,
факультет фундаментальной медицины,
Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова (Москва, Россия)
М.Б. Петрова
д.б.н., профессор, зав. кафедрой биологии,
ФГБОУ ВО «Тверской государственный медицинский университет Минздрава России» (г. Тверь, Россия)
E-mail: education@tvgmu.ru
Н.Ю. Колгина
к.м.н., доцент, зав. кафедрой фармакологии и клинической фармакологии,
ФГБОУ ВО «Тверской государственный медицинский университет Минздрава России» (г. Тверь, Россия)
Г.А. Петров
к.м.н., доцент, кафедра фармакологии и клинической фармакологии,
ФГБОУ ВО «Тверской государственный медицинский университет Минздрава России» (г. Тверь, Россия)

Актуальность. Важной составляющей механизма действия психотропных лекарственных средств является их влияние на обмен нейроактив-ных аминокислот. Изменение содержания аминокислот в структурах головного мозга крыс может выступать в роли фармакодинамического мар-кера, а также диагностического признака при изучении патогенеза заболеваний центральной нервной сиситемы. Цель исследования – разработка ВЭЖХ-МС/МС методики количественного определения нейроактивных аминокислот в гомогенатах головного мозга крыс после дериватизации с 9-флуоренилметилхлорформиатом. Материал и методы. Исследовали гомогенат мозговой ткани крыс. Выделение аминокислот из мозга крыс осуществляли с помощью гомогени-затора Поттера–Эльвейема. Депротеинизацию и дериватизацию проводили путем добавления к образцам раствора 9-флуоренилметилхлорформиата в ацетонитриле. Детектирование производных аминокислот выполняли с помощью масс-спектрометра Sciex 3200, для хроматографического разделения использовали ВЭЖХ Agilent 1260 Infinity II. Элюирование осуществляли смесью ацетонитрила и воды в гра-диентном режиме. Результаты. Пробоподготовка представляла собой смешивание 100 мкл гомогената мозговой ткани крыс, 100 мкл боратного буфера, 20 мкл 1 мМ раствора норвалина и 250 мкл 12 мМ раствора Fmoc-Cl в ацетонитриле с последующим центрифугированием в течение 10 мин. Для разделе-ния Fmoc-производных аминокислот использовали хроматографическую колонку InfinityLab Poroshell 120 EC-C18 4,6×100 мм, 2,7 мкм. Общее время хроматографического анализа – 10 мин, время удерживания Fmoc-производных глицина, ГАМК, аспарагиновой и глутаминовой кислот, аспарагина и глутамина – 6,7; 6,8; 6,4; 6,4; 6,2 и 6,1 мин соответственно. Аналитический диапазон методики для каждой аминокислоты составил от 0,05 до 50 нмоль в 1 мл гомогената. Апробация методики была произведена путем анализа содержания аминокислот в головном мозге шести интактных крыс Wistar. Заключение. Разработана хромато-масс-спектрометрическая методика количественного определения глутамина, аспарагина, глицина, ГАМК, глутаминовой и аспарагиновой кислоты в гомогенатах головного мозга крыс. Для повышения чувствительности анализа была проведена пред-колоночная дериватизация аминокислот с 9-флуоренилметилхлорформиатом.

Ключевые слова: 
ВЭЖХ-МС/МС
хроматография
масс-спектрометрия
нейроактивные аминокислоты.
Для цитирования: 
Попов Н.С., Балабаньян В.Ю., Петрова М.Б., Колгина Н.Ю., Петров Г.А. ПРИМЕНЕНИЕ ВЭЖХ-МАСС-СПЕКТРОМЕТРИИ ДЛЯ КОЛИЧЕСТВЕННОГО АНАЛИЗА НЕЙРОАКТИВНЫХ АМИНОКИСЛОТ В ГОМОГЕНАТАХ ГОЛОВНОГО МОЗГА КРЫС ПОСЛЕ ДЕРИВАТИЗАЦИИ С 9-ФЛУОРЕНИЛМЕТИЛХЛОРФОРМИАТОМ . Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии, 2022; (5): 35-44https://doi.org/10.29296/25877313-2022-05-06

Список литературы: 
  1. Федеральный закон от 12 апреля 2010 г. № 61 «Об обращении лекарственных средств». М. 56 с. В ред. от 11.06.2021.
  2. Руководство по проведению доклинических исследований ле-карственных средств. ФГБУ «НЦЭСМП» Минздравсоцразви-тия России. М.: Гриф и К, 2012. 944 с.
  3. Chen X., Broeyer F., de Kam M., Baas J., Cohen A., van Gerven J. Pharmacodynamic response profiles of anxiolytic and sedative drugs. British journal of clinical pharmacology. 2017; 83(5): 1028–1038. doi.org/10.1111/bcp.13204
  4. Sousa A., Dinis-Oliveira R.J. Pharmacokinetic and pharmacodynamic of the cognitive enhancer modafinil: Relevant clinical and forensic aspects. Substance abuse. 2020; 41(2): 155–173. doi.org/10.1080/08897077.2019.1700584
  5. Mankar S.S., Turan S.P., Mankar S.S., Shelke, P.A. Antidepressant in animal models of depression and study of cognitive property. GSC Biological and Pharmaceutical Sciences. 2019; 7(3): 64–76. doi.org/10.30574/gscbps.2019.7.3.0069
  6. Bourin M. Mechanisms of Action of Anxiolytics. Psychiatry and Neuroscience Update. Springer, Cham. 2021: 195–211. doi.org/ 10.1007/978-3-030-61721-9_18
  7. Piras F., Vecchio D., Assogna F., Pellicano C., Ciullo V., Banaj N. Spalletta G. Cerebellar gaba levels and cognitive interference in parkinson’s disease and healthy comparators. Journal of Personalized Medicine. 2021; 11(1): 16. doi.org/10.3390/jpm11010016
  8. Li J., Chen L., Guo F., Han X. The Effects of GABAergic System under Cerebral Ischemia: Spotlight on Cognitive Function. Neural Plasticity. 2020. doi.org/10.1155/2020/8856722
  9. Procter A. W., Bowen D. M. Cerebral Biopsy in the Neurochemical Study of Alzheimer Disease. Alzheimer Disease. CRC Press. 2020: 279–294.
  10. Srinivasa Rajagopalachari N.K., Shanmugasundaram P. Analytical method validation for the determination of Ninhydrin Positive Substances in amino acids by High Performance Liquid Chromatography. Annals of the Romanian Society for Cell Biology. 2021; 25 (6): 4323–4330.
  11. Uutela P., Ketola R. A., Piepponen P., Kostiainen R. Comparison of different amino acid derivatives and analysis of rat brain microdialysates by liquid chromatography tandem mass spectrometry. Analytica chimica acta. 2009; 633(2): 223–231. doi.org/10.1016/j.aca.2008.11.055
  12. Ziegler J., Hussain H., Neubert R. H. Abel S. Sensitive and selective amino acid profiling of minute tissue amounts by HPLC/electrospray negative tandem mass spectrometry using 9-fluorenylmethoxycarbonyl (Fmoc-Cl) derivatization. Amino Acid Analysis. Humana, New York. 2019: 365–379. doi.org/10.1007/978-1-4939-9639-1_27
  13. Peng M. Z., Cai Y. N., Shao Y. X., Zhao L., Jiang M. Y., Lin Y. T., Liu L. Simultaneous quantification of 48 plasma amino acids by liquid chromatography-tandem mass spectrometry to investigate urea cycle disorders. Clinica Chimica Acta. 2019; 495: 406-416. doi.org/10.1016/j.cca.2019.05.011
  14. Minkler P., Stoll M., Ingalls S., Yang S., Kerner J., Hoppel C. Quantification of carnitine and acylcarnitines in biological matrices by HPLC electrospray ionization-mass spectrometry. Clin. Chem. 2008; 54: 1451–1462. doi.org/10.1373/clin-chem.2007.099226