ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЙ МОРФОГЕНЕЗ AMOMUM TSAO-KO CREVOST & LEMARIE В КУЛЬТУРЕ IN VITRO

DOI: https://doi.org/10.29296/25877313-2022-07-08
Номер журнала: 
7
Год издания: 
2022

К.B. Кухат
аспирант, кафедра биотехнологии,
Российский государственный аграрный университет – МСХА имени К.А. Тимирязева (Москва, Россия);
преподаватель, факультет биологии и сельского хозяйства,
Ханойский педагогический университет (г. Ханой, Республика Вьетнам)
E-mail: khuatquyetst@gmail.com
Х.Т. Нгуен
к.б.н., доцент кафедры биотехнологии растений,
Вьетнамский национальный аграрный университет (г. Ханой, Республика Вьетнам)
E-mail: nthaicnsh@vnua.edu.vn
Е.А. Калашникова
д.б.н., профессор, кафедра биотехнологии,
Российский государственный аграрный университет – МСХА имени К.А. Тимирязева (Москва, Россия)
E-mail: kalash0407@mail.ru
Р.Н. Киракосян
к.б.н., доцент, кафедра биотехнологии,
Российский государственный аграрный университет – МСХА имени К.А. Тимирязева (Москва, Россия)
E-mail: mia41291@mail.ru

Актуальность. Перспективным направлением исследований в области биотехнологии является изучение in vitro эндемичных растений, исполь-зуемых в народной медицине. К таким растениям относиться черный кардамон (Amomum tsao-ko Crevost & Lemarie). Экстракты и эфирное масло этого лекарственного растения применяют при лечении респираторных заболеваний, они обладают антимикробным действием, а также ингиби-руют развитие раковых клеток человека. Основной способ размножения A. tsao-ko – семенной и вегетативный. Однако эти способы имеют как преимущества, так и недостатки. Поэтому необходимо разрабатывать тех-нологию быстрого размножения данной культуры in vitro. Цель исследования – изучение A. tsao-ko Crevost & Lemarie в культуре in vitro. Материал и методы. Объект исследования – семена A. tsao-ko, собранные в кардамоновом лесу в деревне Sin Cau (22° 23'04,5" N 103° 32'44,0" в.д.), коммуна Giang Ma, район Tam Duong, провинция Lai Chau, Северо-Западный регион Вьетнама. Семена поверхностно стерилизовали 0,1%-ным раствором сулемы в течение 10 мин, затем проводили скарификацию, после чего семена культивировали на питательной среде, со-держащей различные концентрации минеральных солей по прописи Мурасига и Скуга (МС). На этапе размножения изучали влияние БАП (0,5–4 мг/л) и кинетана (0,5–2 мг/л) в сочетании с НУК (0,5–1 мг/л) на пролиферацию побегов и образование адвентивных почек. На конечном этапе клонального микроразмножения исследовали влияние НУК и ИМК (0,25–1 мг/л) на укоренение микропобегов A. tsao-ko. Результаты. Установлено, что скарификация приводит к повышению всхожести семян на 12% по сравнению с контрольным вариантом. Куль-тивирование изолированных эксплантов на питательной среде, содержащей 1/16 нормы минеральных солей по МС, БАП 4 мг/л и НУК 0,5 мг/л способствовало получению самых высоких показателей по количеству адвентивных побегов, их росту и количеству корней из расчета на один эксплант. Наилучший результат по укоренению микропобегов получен на среде, содержащей 0,5 мг/л ИМК.

Ключевые слова: 
черный кардамон
морфогенез
клональное микроразмножение
in vitro
лекарственные растения
Для цитирования: 
Кухат К.B., Нгуен Х.Т., Калашникова Е.А., Киракосян Р.Н. Экспериментальный ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЙ МОРФОГЕНЕЗ AMOMUM TSAO-KO CREVOST & LEMARIE В КУЛЬТУРЕ IN VITRO . Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии, 2022; (7): -https://doi.org/10.29296/25877313-2022-07-08

Список литературы: 
  1. Lamxay V., Newman M.F. A revision of Amomum (Zingi-beraceae) in Cambodia, Laos and Vietnam. Edinburgh Jour-nal of Botany. 2012; 69(1): 99206.
  2. Nguyen Q.B. Flora of Vietnam (Hanoi, Vietnam: Publishing House for Science and Technology). 2017. P. 128164.
  3. Jafri M.A., Javed K., Singh S. Evaluation of the gastric antiulcerogenic effect of large Cardamom (fruits of Amomum subulatum Roxb). Journal of Ethnopharmacology. 2001; 75(23): 8994.
  4. Do T.L. Vietnamese medicinal plants and herbs (Hanoi, Vietnam: Medical Publishing House). 2005; 404405.
  5. Verma S.K., Rajeevan V., Bordia A., Jain V. Greater carda-mom (Amomum subulatum Roxb.)  A Cardio adaptogen against physical stress. J. Herb. Med. Toxicol. 2010; 4(2): 5558.
  6. Li W., Wang P.J., Shigematsu M., Lu Z.G. Chemical com-position and antimicrobial activity of essential oil from Amo-mum tsao-ko cultivated in Yunnan area. Advanced Materials Research. 2011; 183: 91014.
  7. Zhang T.T., Lu C.L., Jiang J.G. Antioxidant and anti-tumour evaluation of compounds identified from fruit of Amomum tsao-ko Crevost et Lemaire. Journal of Functional Foods. 2015; 18: 423431.
  8. Nguyen B.H., Nguyen D.T. Planting techniques using and processing medicinal plants (Hanoi, Vietnam: Agricultural publisher). 2005; 221227.
  9. Rao M., Wenli Z., Fanhua W., Chunlin Q., Guixiu H. In vitro Culture of Amomu longiligulare T.L. Wu. Chinese jounal of tropical agriculture. 2003; 4: 14.
  10. Tefera W., Wannakrairoj S. Micropropagation of Krawan (Amomum krervanh Pierre exgagnep). Sci. Asia. 2004; 30: 915.
  11. Sajina A., Mini P.M., John C.Z., Nirmal B.K., Ravindran P.N., Peter K.V. Micropropagation of large cardamom (Amomum subulatum Roxb.). Journal of Spices and Aromatic Crops. 1997; 6(2): 145148.
  12. Pradhan S., Basistha B.C., Subba K.B. In vitro micro-propagation of Amomum subulatum (Zingiberaceae), a major traditional cash crop of Sikkim Himalaya. International Jour-nal of Life Sciences Biotechnology and Pharma Research. 2014; 3(2): 169180.
  13. Poudel K., Prasai H.K., Shrestha J. Micropropagation and Acclimatization of Large Cardamom (Amomum subulatum Roxb.). Turkish Journal of Agricultural and Natural Sciences. 2018; 5(3): 231235.
  14. Dang N.P., Nguyen T.T., Duong T.T.C., Truong T.B.P. In vitro propagation of Amomum longiligulare T.L.Wu. ournal of Biotechnology. 2011; 9 (4A): 681688.
  15. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiologia plantarum, 1962; 15(3): 473497.
  16. Scott S., Jones R., Williams W. Review of data analysis methods for seed germination. Crop science. 1984; 24(6): 11921199.
  17. Esechie H. Interaction of salinity and temperature on the germination of sorghum. Journal of Agronomy and Crop Science, 1994; 172(3): 194199.
  18. Калашникова Е.А., Миронова О.Ю., Лаврова Н.В., Кочиева Е.З., Чередниченко М.Ю., Карсункина Н.П., Калашников Д.В., Пронина Н.Б. Лабораторный практикум по сельскохозяйственной биотехнологии. Изд. 2-е. М., 2004. [Kalashnikova E.A., Mironova O.Yu., Lavrova N.V., Kochieva E.Z., Cherednichenko M.Yu., Karsunkina N.P., Kalashnikov D.V., Pronina N.B. Laboratornyj praktikum po sel'skohozyajstvennoj biotekhnologii, Izd. 2-e. M., 2004.]
  19. Калашникова Е.А., Киракосян Р.Н. Современные аспекты биотехнологии. М., 2016 [Kalashnikova E.A., Kirakosyan R.N. Sovremennye aspekty biotekhnologii. M., 2016].
  20. Quyet, K.V., Kalashnikova E.A., Kirakosyan R.N. In vitro germination of Amomum tsao-ko Crevost & Lemariе seeds. IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. 2021; IOP Publishing.
  21. Pradhan S. et al. In vitro micropropagation of Amomum subulatum (Zingiberaceae), a major traditional cash crop of Sikkim Himalaya. International Journal of Life Sciences Biotechnology and Pharma Research. 2014; 3(2): 169.
  22. Purohit S. et al. Micropropagation and genetic fidelity analysis in Amomum subulatum Roxb.: a commercially important Himalayan plant. Journal of Applied Research on Medicinal and Aromatic Plants. 2017; 4: 2126.
  23. Phuc N.D. et al. In vitro propagation of Amomum longi-ligulare T.L. Wu. Journal of Biotechnology. 2011; 9(4A): 689698.
  24. Reghunath R.B.., Bajaj Y. Micropropagation of cardamom (Elettaria cardamomum Maton). High-Tech and Micro-propagation III. 1992; 175198.
  25. Reghunath R.B. In vitro studies on the propagation of car-damom (Elettaria cardamomum Maton). Kerala Agric Univ: Trichur, India. 1989