АНТИОКСИДАНТНАЯ АКТИВНОСТЬ НОВЫХ ПРОИЗВОДНЫХ ХРОМОН-3-АЛЬДЕГИДА В УСЛОВИЯХ МЫШЕЧНОЙ ДИСФУНКЦИИ

DOI: https://doi.org/10.29296/25877313-2018-06-07
Номер журнала: 
6
Год издания: 
2018

А.В. Воронков д.м.н., доцент, Пятигорский медико-фармацевтический институт – филиал ФГБОУ ВО ВолгГМУ (г. Пятигорск) E-mail: prohor.77@mail.ru Д.И. Поздняков преподаватель, Пятигорский медико-фармацевтический институт – филиал ФГБОУ ВО ВолгГМУ (г. Пятигорск) E-mail: pozdniackow.dmitry@yandex.ru В.М. Руковицина аспирант, Пятигорский медико-фармацевтический институт – филиал ФГБОУ ВО ВолгГМУ (г. Пятигорск) E-mail: rukovitcina.vika@mail.ru Э.Т. Оганесян д.фарм.н, профессор, Пятигорский медико-фармацевтический институт – филиал ФГБОУ ВО ВолгГМУ (г. Пятигорск) E-mail: edwardow@mail.ru

Проведено исследование оценки антиоксидантной активности новых производных хромон-3-альдегида в условиях мышечной дисфункции. Уста-новлено, что пять соединений, в основе которых лежит привилегированное ядро хромона, обладают антиоксидантной активностью, выражаемой в ингибировании процессов перекисного окисления липидов и восстановлении активности ферментов эндогенной антиоксидантной защиты, при этом наиболее выраженными антиоксидантными свойствами в ряду изучаемых объектов обладает соединение Х3АОАС, сопоставимое по активности с референтным препаратом – мексидолом.

Ключевые слова: 
антиоксиданты
мышечная дисфункция
окислительный стресс
производные хромона

Список литературы: 
  1. Salazar-Degracia A., Busquets S., Argilés J.M., et. al. Formoterol attenuates increased oxidative stress and myosin protein loss in respiratory and limb muscles of cancer cachectic rats // Peer J. 2017, 5:e4109. doi:10.7717/peerj.4109.
  2. Barreiro E., Bustamante V., Cejudo P., et. al. Guidelines for the evaluation and treatment of muscle dysfunction in patients with chronic obstructive pulmonary disease // Archivos de Bronconeumología. 2015; 51:384–395. doi: 10.1016/j.arbres.2015.04.011.
  3. Ryan M.J., Jackson J.R., Hao Y., et. al. Inhibition of xanthine oxidase reduces oxidative stress and improves skeletal muscle function in response to electrically stimulated isometric contractions in aged mice // Free radical biology & medicine. 2011;51(1):38-52. doi:10.1016/j.freeradbiomed.2011.04.002.
  4. Powers S.K., Ji L.L., Kavazis A.N., Jackson M.J. Reactive oxygen species: impact on skeletal muscle // Comprehensive Physiology. 2011, 1(2):941-969. doi:10.1002/cphy.c100054.
  5. Kozakowska M., Pietraszek-Gremplewicz K., Jozkowicz A., Dulak J. The role of oxidative stress in skeletal muscle injury and regeneration: focus on antioxidant enzymes // Journal of Muscle Research and Cell Motility. 2015, 36:377-393. doi:10.1007/s10974-015-9438-9.
  6. Barbieri E., Sestili P. Reactive oxygen species in skeletal muscle signaling // J. Signal Transduct. 2012, 2012:982794.
  7. Reid M.B. Free radicals and muscle fatigue: Of ROS, canaries, and the IOC // Free Radic. Biol. Med. 2008, 44:169–179.
  8. Yang Kuo L.M., Zhang L.J., Huang H.T., et. al. Antioxidant lignans and chromone glycosides from Eurya japonica // J. Nat. Prod. 2013, 76(4):580–587. doi: 10.1021/np3007638.
  9. Воронина Т.А., Капица И.Г., Иванова Е.А. Cравнительное исследование влияния мексидо-ла и милдроната на физическую работоспособ-ность в эксперименте // Журнал неврологии и психиатрии им. C.C. Корсакова. 2014. № 117(4). С. 71–74.
  10. Gregory N.S., Gibson-Corley K., Frey-Law L., et. al. Fatigue-enhanced hyperalgesia in response to muscle insult: induction and development occur in a sex-dependent manner // Pain. 2013, 154(12):2668–2676. doi:10.1016/j.pain.2013.07.047.
  11. Стальная И.Д., Гаришвили Т.Г. Метод определения малонового диальдегида с помо-щью ТБК // Современные методы в биохимии / Под. ред. В.Н. Ореховича. М.: Медицина. 1977. С. 44–46.
  12. Гаврилов В.Б., Мишкорудная М.И. Спек-трофотометрическое определение содержания гидроперекисей липидов в плазме крови // Ла-бораторное дело. 1983. № 3. С. 33–35.
  13. Королюк М.А. Метод определения актив-ности каталазы // Лабораторное дело. 1988. № 1. С. 16–19.
  14. Kładna A., Berczyński P., Piechowska T., et. al. Studies on the antioxidant activities of some new chromone compounds // Luminescence. 2014, 29:846–853, doi: 10.1002/bio.2631.
  15. Wang X., Gao B., Liu X., et al. Salinity stress induces the production of 2-(2-phenylethyl)chromones and regulates novel classes of responsive genes involved in signal transduction in Aquilaria sinensis calli // BMC Plant Biology. 2016, 16:119. doi:10.1186/s12870-016-0803-7