ВОЗДЕЙСТВИЕ УФ-Б ЛУЧЕЙ НА IN VITRO КУЛЬТУРЫ ЛЬНА-ДОЛГУНЦА И НАКОПЛЕНИЕ В НИХ ФЕНОЛЬНЫХ СОЕДИНЕНИЙ

DOI: https://doi.org/10.29296/25877313-2019-10-06
Номер журнала: 
10
Год издания: 
2019

Е.А. Гончарук к.б.н., ст. науч. сотрудник, Институт физиологии растений им. К.А. Тимирязева Российской академии наук (Москва) E-mail: goncharuk.ewgenia@yandex.ru Л.В. Назаренко к.б.н., доцент, ГАОУ ВО Московский городской педагогический университет, Институт естествознания и спортивных технологий (Москва) E-mail: nlv.mgpu@mail.ru Н.В. Загоскина д.б.н., профессор, Институт физиологии растений им. К.А. Тимирязева Российской академии наук (Москва) E-mail: biophenol@gmail.com

Изучено воздействие УФ-Б лучей на физиолого-биохимические характеристики штаммов каллусных культур, инициированных из проростков двух сортов льна-долгунца (Linum usitatissimum L.), контрастных по устойчивости к стрессовым воздействиям. Выявлены изменения в морфоло-гии каллусов. Отмечено увеличение содержания в них фенольных соединений. Исходя из полученных данных, можно рекомендовать использо-вать выращивание клеточных культур растений в условиях действия УФ-Б лучей как потенциальных «кандидатов» для повышения накопления в них фенольных соединений – биологически активных веществ с антиоксидантной активностью.

Ключевые слова: 
лен-долгунец
Linum usitatissimum L.
каллусная культура
УФ-Б лучи
фенольные соединения
Для цитирования: 
Гончарук Е.А., Назаренко Л.В., Загоскина Н.В. ВОЗДЕЙСТВИЕ УФ-Б ЛУЧЕЙ НА IN VITRO КУЛЬТУРЫ ЛЬНА-ДОЛГУНЦА И НАКОПЛЕНИЕ В НИХ ФЕНОЛЬНЫХ СОЕДИНЕНИЙ . Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии, 2019; (10): -https://doi.org/10.29296/25877313-2019-10-06

Список литературы: 
  1. Dotto M., Casati P. Developmental reprogramming by UV-B radiation in plants // Plant Science. 2017. V. 264. P. 96–101.
  2. Запрометов М.Н. Фенольные соединения: распространение, метаболизм и функции в растениях. М.: Наука. 1993. 272 с.
  3. Bidel L.P., Coumans M., Baissac Y., Doumas P., Jay-Allemand C. Biological activity of phenolics in plant cells // Recent advances in polyphenol research. United Kingdom: Blackwell Publising Ltd. 2010. V. 2. P. 163–205.
  4. Santin M., Lucini L., Castagna A., Rocchetti G., Hauser M.T., Ranieri A. Comparative “phenol-omics” and gene expression analyses in peach (Prunus persica) skin in response to different postharvest UV-B treatments // Plant physiology and biochemistry. 2019. V. 135. P. 511–519.
  5. Бутенко Р.Г. Биология клеток высших растений in vitro и био-технологии на их основе. М.: ФБк-Пресс.1999. 160 с.
  6. Nosov A.M. Application of cell technologies for production of plant-derived bioactive substances of plant origin // Applied bio-chemistry and microbiology. 2012. V. 48. P. 609–624.
  7. Толкачев О.Н., Жученко А.А.-мл. Биологически активные ве-щества льна: использование в медицине и питании // Химико-фармацевтический журнал. 2000. № 7. С. 23–28.
  8. Титок В.В., Лемеш В.А., Хотылева Л.В. Лен культурный. Классификация, ботаническая и хозяйственная характеристика, генетика, физиология, биохимия и биотехнология. Saarbrücken: LAP LAMBERT Academic Publishing. 2012. 268 с.
  9. Государственный реестр селекционных достижений, допущен-ных к использованию. Т. 1. Сорта растений https://reestr.gossort.com/reestr.
  10. Zagoskina N.V., Goncharuk E.A., Alyavina A.K. Effect of cadmium on the phenolic compounds formation in the callus cultures derived from various organs of the tea plant // Russian Journal of Plant Physiology. 2007. V. 54. P. 237–243.
  11. Mierziak J., Kostyn K., Kulma A. Flavonoids as important molecules of plant interactions with the environment // Molecules. 2014. V. 19. P. 16240-16265.
  12. Ahmad W., Zahir A., Nadeem M., Garros L., Drouet S., Renouard S., Abbasi B.H. Enhanced production of lignans and neolignans in chitosan-treated flax (Linum usitatissimum L.) cell cultures // Process biochemistry. 2019. V. 79. P. 155–165.